Guia docente
DATOS IDENTIFICATIVOS 2011_12
Asignatura FUNDAMENTOS DE BIOLOGÍA CELULAR APLICADA Código 00203134
Enseñanza
LIC. BIOLOGIA
Descriptores Cr.totales Tipo Curso Semestre
5 Troncal Cuarto Primero
Idioma
Prerrequisitos
Departamento BIOLOGIA MOLECULAR
Responsable
PAZ CABELLO , PAULINO DE
Correo-e ppazc@unileon.es
aferl@unileon.es

mplopf@unileon.es
fmarp@unileon.es
vrobr@unileon.es
Profesores/as
FERNÁNDEZ LÓPEZ , ARSENIO
FERNÁNDEZ RIESCO , MARTA
LÓPEZ FIERRO , MARÍA DEL PILAR
MARTÍNEZ PASTOR , FELIPE
MARTÍNEZ RODRIGUEZ , CARMEN
PAZ CABELLO , PAULINO DE
ROBLES RODRÍGUEZ , VANESA
Web http://
Descripción general

Enseñar a los alumnos criterios y métodos para obtener documentación científica, con especial incidencia en el campo de la biología celular.

El alumno debe aprender a organizar un cuaderno de laboratorio.

El alumno debe aprender los fundamentos y adquirir práctica en la realización de algunas técnicas básicas en el campo de la biología celular.
Tribunales de Revisión
Tribunal titular
Cargo Departamento Profesor
Tribunal suplente
Cargo Departamento Profesor

Objetivos

Enseñar a los alumnos criterios y métodos para obtener documentación científica, con especial incidencia en el campo de la biología celular.

El alumno debe aprender a organizar un cuaderno de laboratorio.

El alumno debe aprender los fundamentos y adquirir práctica en la realización de algunas técnicas básicas en el campo de la biología celular.

Metodologías

Se utilizaran recursos de internet y bibliografía tradicional para enseñar a los alumnos el uso de documentación bibliográfica.

Los fundamentos de los métodos y técnicas se expondrán por los profesores de la asignatura en clases de teoría. A los alumnos se les proporcionará un protocolo de la actividad a realizar. Los alumnos realizaran en el laboratorio las prácticas en grupos siguiendo el protocolo y supervisados por un profesor. Los alumnos harán un cuaderno de laboratorio con las prácticas realizadas.

Contenidos
Bloque Tema
"PROGRAMA TEÓRICO Tema 1. Manejo de la información en investigación. Fuentes de información científica. Acceso a la documentación. Tema 2. Bases teóricas de la preparación de muestras microscópicas: Fijación, congelación, inclusión, corte y tinción. Tema 3. Fundamentos de la microscopía electrónica. Técnicas de preparación de muestras. Microanálisis de rayos X. Tema 4. Otros tipos de microscopía. Microscopio de fuerzas atómicas. Microscopio Confocal. Citometría de flujo. Tema 5. Histoquímica. Condiciones, etapas y controles de las reacciones histoquímicas. Tipos de reacciones histoquímicas. Tema 6. Histoenzimática. Condiciones, etapas y controles de las reacciones histoenzimáticas. Tipos de reacciones histoenzimáticas. Tema 7. Inmunocitoquímica: conceptos básicos. Anticuerpos: características generales. Bases moleculares de la respuesta inmunitaria. Tema 8. Obtención de anticuerpos policlonales y monoclonales. Bases de las técnicas de inmunodetección. Dot-blot, Western-blot,Inmunocitoquímica. Tema 9. Conceptos generales del cultivo de tejidos. Cultivos primarios y secundarios. Cultivos adherentes y en suspensión. Líneas celulares. Aislamiento y caracterización de tipos celulares específicos. PROGRAMA PRÁCTICO Práctica 1. Fijación y almacenado de muestras. Microtomía. Obtención de secciones de bloques de parafina y de muestras congeladas. Tinción con hematoxilina-eosina, montaje, observación e interpretación de las preparaciones obtenidas. Práctica 2. Tinción de secciones con las técnicas de: Azul alcian, PAS y PERLS. Demostración histoenzimática de la actividad NADH tetrazolium - reductasa. Observación e interpretación de las preparaciones obtenidas. Práctica 3. Preparación de muestras para la microscopía electrónica de transmisión. Ultramicrotomía. Técnicas especiales. Preparación de muestras para microscopía electrónica de barrido. El punto crítico. Sombreado metálico. Observación de muestras en microscopía electrónica. Manejo de microscopios. Microanálisis de rayos X. Práctica 4. Manejo de cultivos celulares. Obtención de suspensiones y explantes. Recuento y viabilidad celular. Práctica 5. Técnicas de inmunodetección y dot-blot. ACTIVIDADES NO PRESENCIALES La asignatura incluye 5 horas no presenciales en las cuales el alumno desarrollará: A) Un supuesto práctico que se le planteará al inicio de las sesiones prácticas. B) Organización del trabajo de laboratorio: planificación de un trabajo experimental, diagramas de tiempo. Localización de información científica a través de internet."

Otras actividades
Los 0,5 créditos correspondientes a teoría no presencial, serán empleados por los alumnos, bajo supervisión del profesorado, para la consulta de bibliografía y la elaboración de sus cuadernos de laboratorio y del supuesto práctico. "

Evaluación
  descripción calificación
 
Otros comentarios y segunda convocatoria

Al comienzo de cada sesión práctica los alumnos realizaran un test rápido de pocas preguntas para demostrar que han leido cuidadosamente el protocolo y conocen los fundamentos, la metodología y la naturaleza y riesgos de los productos que utilizan en la práctica (evaluación continua). La asistencia a las prácticas es obligatoria. La valoración de estos tests representará hasta el 20% de la nota final de la asignatura.

Se realizará un examen final que comprenderá un test de preguntas múltiples en el que las respuestas incorrectas se valorarán negativamente. Además el examen incluirá el desarrollo de un supuesto práctico que versará sobre algunas de las técnicas realizadas en prácticas. Para su valoración se tendrán en cuenta la exactitud, precisión y expresión de los conceptos. La calificación del examen representa el 60% de la nota final de la asignatura.

El trabajo desarrollado por el alumno en las horas no presenciales consistirá en la resolución de un supuesto práctico y representará el 20% de la nota final de la asignatura.


Fuentes de información
Acceso a la Lista de lecturas de la asignatura

Básica

BURCK H.C. Y CITOLER P. 1969 . Técnica histológica. Editorial Paz Montalvo. Madrid.

MARTOJA R. Y MARTOJA-PIERSON, M. 1970. Técnicas de histología animal. Toray-Masson, S.A. Barcelona.

ROBINSON D.G., EHLERS U., HERKEN R., HERRMANN B., MAYER F. Y SCHÜRMANN F.W. 1987. Methods of preparation for electrón microscopy: An introduction forthe biomedical sciences. Springer-Verlag

FRESHNEY R.I. 2000. Culture of animal cells. A manual of basic technique. John Wiley & Sons, lnc. New York.

SAMBROOK J., FRITSCH E.F. Y MANIATIS T. 1989. Molecular cloning. A laboratory manual. Second Edition. Cold Spring Harbor Laboratory Press
Complementaria
"