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Guia docente |
| DATOS IDENTIFICATIVOS |
2015_16 |
| Asignatura |
MANIPULACIÓN GENÉTICA DE MICROORGANISMOS |
Código |
00206040 |
| Enseñanza |
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| Descriptores |
Cr.totales |
Tipo |
Curso |
Semestre |
| 3 |
Optativa |
Cuarto |
Primero
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| Idioma |
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| Prerrequisitos |
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| Departamento |
BIOLOGIA MOLECULAR
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| Responsable |
| APARICIO FERNÁNDEZ , JESÚS MANUEL |
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Correo-e |
jmapaf@unileon.es
jagils@unileon.es
-
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| Profesores/as |
| APARICIO FERNÁNDEZ , JESÚS MANUEL | | GIL SANTOS , JOSÉ ANTONIO | | PEDRO LOPEZ , ANTONIO DE |
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| Web |
http:// |
| Descripción general |
La manipulacion genetica de microorganismos es una poderosa herramienta que permite mejorar su comportamiento industrial o producir nuevos compuestos de interes biotecnologico.
Genetic manipulation of microorganisms is a powerful tool to improve their industrial performance and to produce new compounds of biotechnological interest. |
| Tribunales de Revisión |
| Tribunal titular |
| Cargo |
Departamento |
Profesor |
| Presidente |
BIOLOGIA MOLECULAR |
CASQUEIRO BLANCO , FRANCISCO JAVIER |
| Secretario |
BIOLOGIA MOLECULAR |
MATEOS DELGADO , LUIS MARIANO |
| Vocal |
BIOLOGIA MOLECULAR |
CASTRO GONZALEZ , JOSE MARIA |
| Tribunal suplente |
| Cargo |
Departamento |
Profesor |
| Presidente |
BIOLOGIA MOLECULAR |
RUBIO COQUE , JUAN JOSE |
| Secretario |
BIOLOGIA MOLECULAR |
POLANCO DE LA PUENTE , CARLOS |
| Vocal |
BIOLOGIA MOLECULAR |
GUTIERREZ MARTIN , SANTIAGO |
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| Código |
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| A9 |
206CMAT106 Conocer las principales enzimas utilizadas en manipulación genética (enzimas de restricción, ligasas, fosfatasas, ADN y ARN polimerasas, etc) |
| A11 |
206CMAT108 Conocer las principales tecnologías para introducción de ADN en células microbianas |
| A40 |
206CMAT134 Conocer los principales tecnologías para la manipulación genéticas de grupos bacterianos de interes: Escherichia coli y Bacillus subtilis, Streptomyces, corinebacterias y levaduras y hongos filamentosos. |
| A42 |
206CMAT136 Conocer y analizar las principales tecnologías para la expresión de un ADN recombinante y los factores que la afectan |
| A90 |
206CMAT18 Análisis de ADN en geles de agarosa |
| A139 |
206CMAT223 Introducción de un ADN en bacterias |
| A151 |
206CMAT234 Manipular enzimáticamente un ADN: digestión, ligación, amplificación, etc |
| A186 |
206CMAT267 Realizar un sencillo proceso de clonación en la bacteria Escherichia coli |
| A281 |
206CMAT76 Conocer el desarrollo de la tecnología del ADN recombinante |
| A296 |
206CMAT9 Aislar ADN plasmídico bacteriano |
| B3 |
206CT3 Bases físicas y químicas de los procesos biológicos. Aplicaciones |
| B6 |
206CT6 Desarrollo y aplicación de productos y procesos de microorganismos |
| B13 |
206CT13 Estructura y función de biomoléculas. Bioensayos y diagnósticos biológicos |
| B14 |
206CT14 Estructura y función de microorganismos y virus, aislamiento y cultivo |
| B21 |
206CT21 Material genético, estructura y organización. Manipulación, análisis y asesoramiento genético |
| B26 |
206CT26 Trabajar de forma adecuada en un laboratorio biológico. Protocolos y procedimientos. |
| B28 |
206CTT2 Análisis y síntesis |
| B29 |
206CTT3 Aprendizaje autónomo |
| B31 |
206CTT5 Comunicación oral y escrita en la lengua nativa |
| B33 |
206CTT7 Diseño de experimentos, obtener información e interpretación de los resultados |
| B34 |
206CTT8 Gestión de la información |
| B38 |
206CTT12 Razonamiento crítico |
| B40 |
206CTT14 Trabajo en equipo |
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Resultados |
Competencias |
| Adquirir conceptos claros sobre los procesos biológicos que pueden ser manipulados y la forma de hacerlo. |
A9
A11
A40
A42
A139
A151
|
B3
B6
B13
B14
B26
B28
B29
B33
B34
B38
B40
|
|
| Dominar los conceptos y metodologías en Ingeniería Genética. |
A9
A11
A40
A42
A90
A139
A151
A186
A281
A296
|
B3
B6
B13
B28
B29
B33
B34
B38
B40
|
|
| Conocer las principales técnicas para la introducción de DNA en células microbianas. |
A11
A139
|
B3
B13
B14
B26
B29
B33
B40
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|
| Conocer los mecanismos moleculares que controlan la expresión génica. |
A9
A42
|
B3
B6
B13
B21
B28
B29
B34
B38
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|
| Conocer los diferentes métodos para la clonación de genes. |
A9
A11
A40
A90
A139
A151
A186
A296
|
B3
B26
B33
B40
|
|
| Dominar los métodos para la mutagénesis in vitro de genes clonados.
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A9
A40
A151
A296
|
B3
B13
B26
B29
B33
B34
B38
B40
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|
| Conocer diferentes estrategias para el análisis funcional de genes. |
A9
A11
A40
A90
A139
A151
A296
|
B3
B13
B14
B21
B28
B29
B31
B34
B38
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|
| Realizar un sencillo proceso de clonación en la bacteria Escherichia coli
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A90
A139
A151
A186
A281
A296
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B3
B21
B26
B40
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| Bloque |
Tema |
| Enzimas y técnicas |
Tema 1.- Conceptos generales. Nucleasas. Funciones biológicas. Enzimas de restricción. Principales tipos de sistemas de restricción-modificación. Nomenclatura. Metilasas.
Tema 2.- Electroforesis en geles de agarosa. y poliacrilamida. Electroforesis en campo pulsado (PFGE). Recuperación de fragmentos de ADN. Southern, Northern y Western.
Tema 3.- Ligasas. Técnicas de ligación. Fosfatasa alcalina. DNA polimerasas. Otras enzimas de modificación de ácidos nucleicos.
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| Vectores |
Tema 4.- Vectores para la clonación de DNA exógeno. Introducción de DNA exógeno en bacterias. Transformación. Competencia natural. Competencia artificial. Electroporación. Transducción. Conjugación. |
| PCR y secuenciación |
Tema 5.- Reacción en cadena de la polimerasa (PCR). Diseño de “primers”. Aplicaciones en clonación de genes, retro-PCR, AFLPs, RAPDs. Mutagénesis por PCR.
Se impartirá en inglés:
Polymerase Chain reaction (PCR). Primer design. Cloning applications, reverse transcription-PCR, AFLPs, RAPDs. Mutagenesis by PCR
Tema 6.- Secuenciación de ADN: Método químico; Método enzimático; Sistemas automáticos; Secuenciación cíclica; Pirosecuenciación. Estrategias de secuenciación.
Se impartirá en inglés:
DNA sequencing: Chemical and enzymetic methods; Automatic systems; Cycle sequencing; Pyrosequencing. Sequencing strategies.
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| Clonación y expresión génica |
Tema 7.- Obtención de genotecas en Escherichia coli. Estrategias de rastreo y utilización de genotecas. (Virtual)
Tema 8.- Expresión de genes clonados en E. coli. Mecanismos de control. RNA polimerasa. Factores sigma. Promotores. Sitios de unión a ribosomas.
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| Análisis funcional de genes |
Tema 9.- Análisis funcional de genes: Estrategias de inactivación génica por recombinación homóloga. |
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descripción |
| Prácticas en laboratorios |
Las sesiones prácticas implicarán el aislamiento de DNA plasmídico, digestiones de DNA, electroforesis en geles de agarosa, aislamiento de DNA a partir de geles de agarosa, ligaciones, transformación con ADN exógeno. Para la identificación del gen de interés se utilizarán métodos genéticos, bioquímicos o de hibridación de ácidos nucleicos. |
| Trabajos |
Se realizará un trabajo monográfico sobre temas de interés |
| Tutorías |
Tradicionales: A demanda del alumno, y previa solicitud por e-mail.
Virtuales: A demanda del alumno y a través de la Moodle de la asignatura.
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| Sesión Magistral |
Se combinará la clase magistral con el uso de presentaciones multimedia. Los temas 5 y 6 se impartirán en lengua inglesa. |
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descripción |
calificación |
| Sesión Magistral |
Conocimiento y comprensión de la materia. Se realizará un examen final teórico que consistirá en un examen tipo test.
La asistencia a las clases de teoría “presenciales” es obligatoria para los alumnos que cursen la asignatura por primera vez. Se hará un control de asistencia, y se podrá rebajar la calificación del examen final hasta un 10% en caso de no asistencia. |
60% de la nota final |
| Prácticas en laboratorios |
La asistencia a las clases de prácticas es obligatoria para los alumnos que cursen la asignatura por primera vez. Se hará un control de asistencia.
Se realizará un examen práctico escrito, con respuestas de elección múltiple. El examen se podrá realizar conjuntamente con el teórico. Se suspenderá la asignatura si no se obtiene más de un 4,0 en el examen práctico.
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30% de la nota final |
| Trabajos |
Se tendrá en cuenta la estructura, calidad, fuentes bibliográficas empleadas, originalidad, uso correcto de terminología específica, claridad y corrección en la redacción.
El trabajo podrá ser presentado en inglés. |
10% de la nota final |
| Otros |
Todas las pruebas de evaluación se regirán normativamente por el “Reglamento de Evaluación y Calificación del Aprendizaje de la ULE” (Aprobado por el Consejo de Gobierno de la ULE el 12-03-2010) y por el documento “Pautas de actuación en los supuestos de plagio, copia o fraude en exámenes o pruebas de evaluación” (Aprobado por la Comisión Permanente del Consejo de Gobierno de la ULE, el 29/01/2015). Concretamente, para todas las pruebas escritas de la asignatura, el alumno deberá ir provisto exclusivamente de bolígrafo (o similares) azul o negro. |
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| Otros comentarios y segunda convocatoria |
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La segunda convocatoria se evaluará igual que la primera. |
Benjamin Lewin, ed, Genes IX , McGraw Hill Educación, 2008